Правила взятия биоматериала в смд. Правила взятия, доставки, приема, оформления и регистрации биологического материала. Общеклинические лабораторные исследования - Документ. В кабинете фельдшер-лаборант открывает крышку контейнера и извлекает оттуда проби
Порядок взятия клинического материала в пробирку с транспортной средой:
1. Открыть крышку пробирки.
2. С помощью одноразового стерильного зонда получить отделяемое соответствующего
биотопа (влагалище, уретра, цервикальный канал).
3.Перенести зонд с клиническим материалом в пробирку с транспортной средой объемом 1,5 мл, когда зонд упрется в дно пробирки, дополнительным усилием согнуть тонкую часть зонда до насечки, затем отломить и оставить зонд в пробирке.При необходимости получения клинического материала из нескольких биотопов повторить процедуру, каждый раз забирая клинический материал новым зондом в новую пробирку.
3. Пробирку плотно закрыть крышкой, промаркировать.
Особенности взятия клинического материала цервикального канала:
1.Клинический материал цервикального канала получают после введения во влагалище гинекологического зеркала с помощью уретрального зонда или цервикальной цитощетки (для исследования на ВПЧ необходимо достаточное количество эпителиальных клеток!).
2.Перед взятием клинического материала необходимо тщательно обработать отверстие цервикального канала с помощью стерильного марлевого тампона и затем обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором.
3.После введения уретрального зонда в шеечный канал на 1,5 см его вращают несколько раз (2-3 полных оборота по часовой стрелке) и извлекают. При извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища.
4. Полученный клинический материал помещается в пробирку с транспортной средой (см. выше).
Особенности взятия клинического материала из влагалища:
В день обследования женщины не должны проводить туалет половых органов и спринцевание влагалища.
1. Клинический материал из влагалища получают с заднего или боковых сводов с помощью вагинального или уретрального зонда путем соскоба с поверхности эпителия.
2. Клинический материал должен быть получен ДО проведения мануального исследования.
3. Перед манипуляцией гинекологическое зеркало можно смочить теплой водой, применение антисептиков для обработки зеркала противопоказано.
4. У девочек (virgo) клинический материал получают со слизистой оболочки преддверия влагалища без использования гинекологического зеркала.
5. Полученный клинический материал помещается в пробирку с транспортной средой (см. выше).
Особенности взятия клинического материала из уретры у женщин:
1. Клинический материал из уретры получают с помощью уретрального зонда.
2.Перед взятием клинического материала пациентке рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов.
3. При наличии свободных уретральных выделений наружное отверстие уретры следует очистить с помощью ватного тампона.
4. При отсутствии свободных выделений может быть проведен легкий массаж уретры.
5. После введения инструмента в уретру на глубину 1 см необходимо продвигать его к наружному отверстию, слегка нажимая на заднюю и боковые стенки уретры (вращательные движения болезненны).
6. Полученный клинический материал помещается в пробирку с транспортной средой(см. выше).
Для исследования материала,полученного из нескольких биотопов, процедуру повторяют, каждый раз используя новый стерильный зонд и новую пробирку!!!
Недопустимо смешивать материал из цервикального канала, влагалищного содержимого и уретры в одной пробирке!
Особенности взятия клинического материала из уретры у мужчин:
1,5–2 часов. Для исключения искажений результатов определения состава микрофлоры урогенитального тракта мужчин из-за присутствия в урогенитальном тракте транзиторной микрофлоры в течение трёх дней перед взятием биоматериала рекомендуется половое воздержание или использование защищенного полового контакта.
1.Перед взятием соскоба из уретры обрабатывают головку полового члена в области наружного отверстия уретры тампоном, смоченным стерильным физиологическим раствором.
2.Производят массаж уретры. При наличии свободно стекающих из уретры выделений удаляют их сухим тампоном.
3.Вводят зонд в уретру на глубину 1-2 см. Несколькими вращательными движениями производят соскоб эпителиальных клеток и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют. Отделяемое забирают в достаточном количестве. Допустимо умеренное присутствие примесей в виде слизи, крови и гноя.
Взятия клинического материала с крайней плоти головки полового члена (ГПЧ):
Перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение
1,5–2 часов.
1.С помощью одноразового зонда делают соскоб эпителиальных клеток из соответствующего биотопа (крайняя плоть головки полового члена, препуциальный мешок) и переносят зонд в пробирку с транспортной средой, обламывают и оставляют.
Условия хранения и транспортировки биоматериала:
1. Пробирки с полученным клиническим материалом должны быть промаркированы.
2. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать: ФИО, возраст пациентки (та), клинический материал, предполагаемый диагноз, показания к обследованию, дату и время взятия пробы, наименование учреждения (подразделения), направляющего клинический материал.
3. Если время транспортировки клинического материала от момента взятия до момента его доставки в лабораторию не более суток, то пробирку с клиническим материалом необходимо хранить и доставлять в лабораторию при температуре бытового холодильника (+ 4+10°С), не замораживая.
4. В случае невозможности доставки клинического образца в лабораторию в течение суток, допускается однократное замораживание и хранение образца клинического материала при температуре -20°С до одного месяца.Проведение исследований методом ПЦР допускается на базе действующих лабораторий при условии организации в лаборатории самостоятельных или выделенных в составе других функциональных помещений рабочих зон, соответствующих этапам ПЦР-анализа.
ПЦР-лаборатория должна включать следующий минимальный набор рабочих зон:
- приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала;
- выделения ДНК/РНК;
- приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР;
- детекции продуктов амплификации методом электрофореза или ГиФА.
Важно отметить, что в случае применения метода нет необходимости в детекции продуктов амплификации методом электрофореза. Следовательно, рабочую зону в помещении лаборатории для электрофореза можно не выделять.
В ПЦР-лабораториях необходимо также предусмотреть наличие вспомогательных помещений: архив (для учетных документов), комнату для персонала, кабинет заведующего, раздевалки для сотрудников, комнаты приема пищи, санитарных комнат (туалет), подсобных помещений (склад).
В идеальном варианте необходимо иметь автоклавную комнату для обеззараживающего исследуемого материала. Она может быть общей с другими подразделениями учреждения при условии соблюдения требований биологической безопасности.
Помещения для выполнения работ на этапах ПЦР-анализа должны быть боксированными (боксы с предбоксами). В зоне приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала проводят прием материала, пробоподготовку (сортировку, маркировку, центрифугирование и прочее), хранение и первичную инактивацию остатков биоматериала дезинфицирующими средствами. Зону приема, регистрации, разбора и первичной обработки материала располагают в комнате приема материала или в отдельном боксированном помещении. Здесь же можно проводить прием и обработку проб для исследования другими методами (иммунология, например), при условии выделения отдельного оборудованного рабочего места для ПЦР-анализа.
Зону выделения ДНК/РНК размещают в отдельном помещении. При организации ПЦР-лаборатории на базе действующей лаборатории допускается выделение ДНК/РНК в помещениях, в которых проводят другие виды исследований, кроме генно-инженерных работ. В этом случае в помещении организуют рабочую зону для выделения ДНК/РНК, в которой располагают ПЦР-бокс или бокс биологической безопасности. В ПЦР-боксе для выделения ДНК/РНК не допускается проведение других видов работ!
В зоне приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР производят приготовление ПЦР-смеси, внесение в пробирку для ПЦР выделенных препаратов ДНК/РНК или кДНК, обратную транскрипцию РНК и амплификацию ДНК или кДНК. Помещение для приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР должно быть отдельным. Приготовление реакционных ПЦР-смесей проводят в ПЦР-боксе.
При необходимости этап выделения ДНК/РНК может быть совмещен в одном помещении с этапом приготовления реакционных смесей и проведения ПЦР при наличии в нем отдельных ПЦР-боксов - для подготовки реакционных ПЦР-смесей и для выделения ДНК/РНК.
Зону детекции продуктов амплификации располагают в отдельном помещении, по возможности оснащенном ПЦР-боксом. При необходимости одновременного использования для детекции продуктов амплификации метода электрофореза и метода гибридизационного анализа следует выделить в помещении детекции отдельную рабочую зону для проведения гибридизационного анализа. В этом случае оборудование и принадлежности для каждого вида детекции маркируют применительно к каждой зоне. Не допускается использовать для проведения гибридизационного анализа пипетки и посуду, предназначенные для электрофореза.
Планировочные решения и размещение оборудования должны обеспечивать поточность движения исследуемого материала. Следует полностью исключить воздухообмен между помещением детекции продуктов амплификации и другими помещениями.
ПЦР-лабораторию оборудуют водопроводом, канализацией, электричеством и отоплением. Все помещения ПЦР-лаборатории обеспечивают достаточным естественным и искусственным освещением.
При строительстве новых или реконструкции имеющихся ПЦР-лабораторий помещения оборудуют приточно-вытяжной или вытяжной вентиляцией. Разница в давлении воздуха в помещениях ПЦР-лаборатории достигается за счет различий в кратности воздухообмена в них. Кратность воздухообмена должна соответствовать значениям, приведенным в таблице:
При необходимости в ПЦР-лаборатории могут быть установлены кондиционеры.
Внутреннюю отделку помещений выполняют в соответствии с их функциональным назначением. Поверхности стен, пола и потолка в лабораторных помещениях должны быть гладкими, без щелей, легко обрабатываемыми, устойчивыми к действию моющих и дезинфицирующих средств. Полы не должны быть скользкими. Лабораторная мебель должна иметь покрытие, устойчивое к действию моющих и дезинфицирующих средств. Поверхность столов не должна иметь трещин и швов. Помещения лаборатории должны быть непроницаемы для грызунов и насекомых. ПЦР-лабораторию обеспечивают средствами пожаротушения.
Пример стандартной операционной процедуры по приему биоматериала в медицинскую лабораторию.
|
НАИМЕНОВАНИЕ УЧРЕЖДЕНИЯ |
||
|
Вид документа |
Стандартная операционная процедура (СОП) |
|
|
Запись в Едином реестре документации лаборатории |
СОП-ПА-01-2014 |
|
|
Экземпляр |
||
|
Общее количество страниц |
||
|
Введена в действие |
||
|
Срок действия |
||
|
Название документа |
Правила приема и регистрации биоматериала в лаборатории. |
|
|
Должность |
||||
|
Разработал: |
||||
|
Проверил: |
||||
|
Согласовано: |
Колонтитул:
|
Наименование |
||
|
Область применения |
||
|
Организация процесса транспортировки биоматериала курьером |
||
|
Прием биоматериала в лаборатории |
||
|
Передача биоматериала и направлений в соответствующие подразделения лаборатории |
||
|
Регистрация бланков-заказов операторами. |
||
|
Приложение №1 Блок-схема |
||
|
Приложение № 2 Виды несоответствий и их устранение |
||
|
Приложение № 3 Датчик температуры холодильника машины |
||
|
Приложение № 4 Бланк-направление |
||
|
Приложение № 5 Лист-ознакомления сотрудников с СОП |
||
1. Область применения
Настоящая стандартная операционная процедура (далее- СОП) определяет порядок приема, регистрации биоматериала, поступающего в лабораторию из процедурного кабинета НАИМЕНОВАНИЕ УЧРЕЖДЕНИЯ и других учреждений, обслуживаемых лабораторией, а также выявление несоответствий и их устранение.
Настоящая СОП предназначена для фельдшера-лаборанта и оператора лаборатории.
- Методические рекомендации « Организация преаналитического этапа при централизации лабораторных исследований крови» (Одобрены на Общероссийской научно-практической конференции «Реальные клинико-диагностические лабораторные услуги: степень соответствия стандартам лабораторной медицины, качество, себестоимость и цена» (Москва, 2-4 октября 2012 г.)
- ГОСТ Р 53079.4─2008. «Технологии медицинские лабораторные. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа». Введен в действие с 1.01.2010 года.
- ISO 15189:2012 «Лаборатории медицинские. Требования к качеству и компетентности»
3. Организация процесса транспортировки биоматериала курьером и ответственность курьера.
3.1. Температуру в холодильнике, которая указана на дисплее в салоне машины, курьер фиксирует в журнале «Журнал учета температурного режима в холодильниках машин », а также в данном журнале курьер указывает свое ФИО, регистрационный знак машины и время отправления машины за биоматериалом непосредственно перед поездкой в учреждения. Данный журнал находится в кабинете №___. (Фото температурного датчика и фото формы журнала приведены в приложении № 3).
3.2. Курьер, прибыв в ЛПУ, идет в регистратуру данного учреждения, где забирает контейнеры с разным биоматериалом. На каждом контейнере указаны название учреждения и тип биоматериала (кровь, моча, кал, предметные стекла с мазками, соскобы). Курьер размещает контейнеры в горизонтальном положении в холодильник машины, как это показано на фотографии.
3.3. Курьер отвечает за целостность контейнеров, их сохранность, за обеспечение должного температурного режима в холодильнике машины (+4 - +8 о С), а также за сохранность биоматериала, доставляемого из учреждений в лабораторию. Во время пути курьер отслеживает температуру в холодильнике машины, которая выводится на дисплей, установленный в салоне машины.
4. Прием биоматериала в лаборатории.
4.1.Температуру, которая указана на табло в холодильнике машины на момент изъятия контейнеров, курьер отмечает в журнале «Журнал учета температурного режима в холодильниках машин » в графе, соответствующей государственному номеру машины. А также в этом же журнале водитель указывает время прибытия машины с биоматериалом из учреждений.
4.2. Курье передает промаркированные контейнеры с образцами крови, мазками и соскобами фельдшеру-лаборанту в кабинет №___.
4.3. Курье передает промаркированные контейнеры с мочой и калом фельдшеру- лаборанту в кабинет №___ .
4.4. В кабинете № ___ фельдшер-лаборант открывает крышку контейнера и извлекает оттуда пробирки с кровью, предметные стекла с мазками и соскобами, папки с направлениями на исследования.
4.5. Фельдшер- лаборант сортирует пробирки с кровью отдельно по штативам, согласно типу пробирок (биохимических, гематологических и коагулологических) и названиям учреждений, которые указаны на штативах.
4.6. В кабинете №____ фельдшер-лаборант извлекает из контейнера образцы с мочой, калом и направления.
5. Передача биоматериала и направлений в соответствующие подразделения лаборатории.
5.1 В кабинете №____ фельдшер -лаборант ставит штативы с пробирками для биохимических, иммунологических, коагулологических исследований в контейнеры с маркировкой « для переноса биоматериала» и относит их в кабинет №___ для центрифугирования.
5.2 Фельдшер-лаборант звонит в отделы гематологии и ПЦР для того, чтоб фельдшеры-лаборанты из соответствующих отделов забрали биоматериал из кабинета №___
5.3. Фельдшер-лаборант передает направления на исследования из кабинета №___ операторам в кабинет №____ для регистрации.
5.4 В кабинете №___ фельдшер-лаборант передает направления операторам, которые регистрируют бланки в том же кабинете.
6. Регистрация бланков-заказов операторами.
6.1. Операторы в кабинете №___, получив бланки-направления от фельдшера-лаборанта из кабинета №___, регистрируют их в лабораторной информационной системе.
Порядок регистрации:
Оператор считывает штрих-код сканером, наклеенный на бланк- направление;
Затем оператор вводит в ЛИС паспортные данные пациента: ФИО, дату рождения, адрес проживания и другие данные: источник заказа (ОМС, ДМС, наличный расчет, диспансеризация), номер учреждения, отделение, ФИО врача, назначившего исследования, диагноз, код МЭС (медико-экономический стандарт).
После этого оператор вносит в ЛИС те показатели, которые назначил лечащий врач, и сохраняет сформированный заказ в ЛИС. Бланк-направление представлен в приложении № 4.
Приложение № 2
В иды несоответствий и их устранение
|
Вид несоответствия |
Описание действий |
Исполнитель |
Ответственный |
|
Нарушение целостности контейнера |
Сообщить об этом старшему лаборанту лаборатории |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
|
Отсутствие направлений на исследования в контейнере |
Фельдшер-лаборант сообщает об этом старшему лаборанту лаборатории, который должен связаться по телефону со старшей мед. Сестрой данного учреждения |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
|
Проливание биологического материала в контейнере |
1. Сообщить об этом старшему лаборанту лаборатории 2. Аккуратно удалить все содержимое из контейнера 3. Провести дезинфекцию самого контейнера и всего содержимого контейнера, что соприкасалось с пролитым биоматериалом. |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
|
Испорченный бланк-направление (порвался, пролилось содержимое контейнера и т.д.) |
1. Фельдшер-лаборант в случае читабельности направления, переносит всю информацию на новый бланк. 2. В случае нечитабельности направления, фельдшер - лаборант сообщает старшему лаборанту, который связывается с старашей мед. Сестрой учреждения. |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
|
Битое(ые) предметные стекла в контейнере |
Фельдшер-лаборант сообщает об этом старшему лаборанту лаборатории, который должен связаться по телефону со старшей мед. Сестрой данного учреждения и доложить о данном несоответствии |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
|
Отсутствие штрих-кода на пробирке |
1.Фельдшер-лаборант сообщает об этом старшему лаборанту лаборатории, который должен связаться по телефону со старшей мед. Сестрой данного учреждения и доложить о данном несоответствие. 2. Данное несоответствие фельдшер-лаборант вносит в в журнал «Регистрации брака» |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
|
Бланк-направление, оформленный в ненадлежащим виде |
1. Фельдшер-лаборант сообщает об этом старшему лаборанту лаборатории, который должен связаться по телефону со старшей мед. Сестрой данного учреждения 2. Фельдшер-лаборант данное несоответствие заносит в журнал «Регистрации брака» 3. На следующий день фельдшер -лаборант отправляет данное направление в то учреждение, из которого оно поступило, для переписывания бланка-направления врачом в читабельном виде. |
фельдшер-лаборант |
Старший лаборант |
Приложение № 3
Датчик температуры холодильника машины
В данном приложении также полезно привести форму журнала, который должен заполнять водитель.
В последующих приложениях приводятся форму бланка-направления и т.д.
Отбор клинического материала осуществляет медицинский персонал с соблюдением правил противоэпидемического режима, только стерильными одноразовыми инструментариями (шприцы, соответствующие зонды, цитощеточки и пр.), в одноразовых перчатках.
Максимально полно собрать материал из выбранного локуса, используя подходящие для этого аппликаторы – зонды, цитощетки (обеспечить адекватность клинического образца).
Сохранить полученный материал (ДНК/РНК микроорганизмов), используя надежные транспортные среды и консерванты, предоставляемые ПЦР-лабораторией. Среда для транспортировки и хранения клинического материала обеспечивает стабильность РНК и ДНК при комнатной температуре до 28 дней.
Поместить взятый материал в вакуэты с ЭДТА (кровь), в одноразовые химически чистые пробирки «Эппендорф» (мазки, ликвор, биоптат и др.). Основным условием при сборе материала является предотвращение попадания в пробу ДНК-аз и рибонуклеаз, т.к. рибонуклеазы и ДНК-азы – ферменты деградации РНК и ДНК. Они чрезвычайно стабильны в окружающей среде, выдерживают длительное кипячение. Основной источник нуклеаз – кожные покровы, частицы пыли. Пластиковые пробирки и наконечники должны иметь маркировку «DNase, RNase- free» (свободные от нуклеаз).
Сразу после забора плотно закрывать пробирки, флаконы с клиническим материалом, не касаясь их внутренней поверхности и внутренней поверхности крышек.
При работе с клиническим материалом, открывая пробирки, флаконы, не производить резких движений и не допускать разбрызгивания и расплескивания, что может привести к контаминации проб и рабочих поверхностей.
Для исключения взаимной контаминации образцы хранить и транспортировать в отдельном полиэтиленовом пакете или штативах. При необходимости переноса образца использовать автоматические микропипетки со сменными одноразовыми наконечниками с аэрозольными барьерами.
До транспортировки в ПЦР-лабораторию отобранный биоматериал хранить при температуре 2–4 °С не более 48 часов. Необходимо минимизировать время от забора образца до постановки ПЦР-анализа. Транспортировка образцов осуществляется в сумках-холодильниках, термоконтейнерах, термосах с термопакетами, льдом или сухим льдом.
Кровь, плазма, сыворотка
Забор крови рекомендуется проводить с использованием вакуумных систем. Внедрение таких систем позволяет стандартизировать манипуляции с кровью, положительно сказывается на всех этапах лабораторного исследования и в целом переводит работу лаборатории на иной, более высокий уровень качества. Их использование гарантирует защиту персонала от инфицирования, сокращается время, затрачиваемое на процедуру забора крови, значительно реже сопровождается гемолизом, позволяет сохранить стерильность проб крови и герметично транспортировать.
Венепункцию рекомендуется выполнять натощак из локтевой вены в специальную вакуумную пробирку с антикоагулянтом, после чего пробирка переворачивается для перемешивания несколько раз. Пробирки с кровью хранят в холодильнике при +4 °С – +8 °С. Максимальный срок хранения крови – 1 сутки (не замораживать!). В случае необходимости длительного хранения необходимо отобрать 1 мл сыворотки или плазмы крови и хранить ее при температуре -16 о -20 о С не более 2 недель.
Характеристика вакуумных систем, используемых для ПЦР-диагностики:
Вакуэты с ЭДТА (6 %) – используются для проведения качественных и количественных исследований. ЭДТА-антикоагулянт хорошо фиксирует нуклеиновые кислоты клетки.
Вакуэты с цитратом натрия (3,8 %) – используются для проведения качественных и количественных исследований. Не подходят для длительной транспортировки, т.к. цитрат является хорошей питательной средой для посторонней микрофлоры.
Вакуэты без антикоагулянтов (сыворотка крови) – используются для проведения качественных исследований. Использования сыворотки крови для количественных исследований нежелательно, т.к. часть инфекционного агента оседает в сгустке крови, при этом снижается возможность определения количественного содержания его в крови.
Вакуэты с гепарином - категорически не подходят для ПЦР - реакции. Гепарин является полианионом, как и ДНК, поэтому в ПЦР-реакции конкурирует с ДНК.
Кафедра клинической лабораторной диагностики с курсом ФПК и ПК
Перечень разделов по дисциплине клиническая лабораторная диагностика для подготовки к выполнению аудиторных контрольных работ в зимнюю лабораторно-экзаменационную сессию студентами 6 курса заочной формы обучения.
1. Организационная структура клинико-диагностической лаборатории.
2. Общеклинические лабораторные исследования.
3. Гематологические лабораторные исследования.
4. Лабораторные методы оценки гемостаза.
5. Биохимические лабораторные исследования.
6. Контроль качества лабораторных исследований.
Перечень контрольных вопросов по дисциплине клиническая лабораторная диагностика для подготовки к выполнению аудиторных контрольных работ в зимнюю лабораторно-экзаменационную сессию студентами 6 курса заочной формы обучения.
Структурная организация клинико-диагностической лаборатории.
Нормативные документы и приказы МЗ РБ, регламентирующие работу клинико-диагностической лаборатории.
Оборудование клинико-диагностической лаборатории.
Основная измерительная и аналитическая аппаратура клинико-диагностической лаборатории.
Основы техники безопасности и правила санэпидрежима при работе в клинико-диагностической лаборатории.
Правила взятия, доставки, приема, оформления и регистрации биологического материала.
Общеклинические лабораторные исследования.
Подготовка пациента к исследованию, сбор, хранение и обработка материала для общего анализа мочи.
Физические свойства мочи: цвет, прозрачность, запах, рН, относительная плотность мочи.
Химические свойства мочи, методы определения общего белка (качественный и количественный методы, методы «сухой химии»).
Определение глюкозы в моче при помощи индикаторной бумаги и глюкозооксидазным методом.
Правила приготовления нативного препарата мочевого осадка.
Количественное определение элементов организованного осадка мочи.
Определение элементов неорганизованного осадка.
Виды неорганизованных осадков.
Общий клинический анализ крови.
Характеристика методов определения СОЭ, концентрации гемоглобина, подсчета количества эритроцитов, цветового показателя, лейкоцитов и лейкоцитарной формулы.
Правила подготовки пациента, забор, хранение и обработка материала для общего клинического анализа крови.
Нормальные значения и пределы физиологических колебаний уровня эритроцитов и лейкоцитов периферической крови.
Правила приготовления препарата и подсчета в камере Горяева.
Метод определения гемоглобина крови гемоглобинцианидным методом.
Современное представление о костно-мозговом кроветворении.
Процентное содержание лейкоцитов в периферической крови. Диагностическое значение лейкоцитарной формулы.
Лабораторные исследования, характеризующие свертывающую систему крови.
Понятие о системе свертывания крови.
Первичный гемостаз. Лабораторные методы исследования первичного гемостаза.
Фазы коагуляционного гемостаза.
Фибринолиз.
Антикоагулянтная система.
Лабораторные методы оценки вторичного гемостаза.
Лабораторные исследования, характеризующие биохимические показатели крови.
Лабораторные показатели, характеризующие белковый обмен. Определение общего белка в сыворотке крови биуретовым методом.
Остаточный азот и его компоненты. Методы определения мочевины, креатинина, мочевой кислоты.
Методы исследования ферментов. Клинико-диагностическое значение определения активности ферментов.
Биологическая роль углеводов. Определение содержания глюкозы ферментативным методом.
Липопротеины плазмы крови. Лабораторные показатели липидного обмена.
Образование и метаболизм желчных пигментов. Клинико-диагностическое значение исследования показателей пигментного обмена.
Аналитическая надежность и контроль качества клинических лабораторных исследований.
Аналитическая оценка лабораторных результатов. Виды ошибок, их характеристика.
Внутрилабораторный контроль качества. Методы контроля воспроизводимости результатов исследования. Контроль правильности результатов исследования.
C оставление аналитического лабораторного заключения.
Аналитическое лабораторное заключение составляется по условиям ситуационной задачи.
На основании их анализа предложенных лабораторных данных необходимо ответить на следующие вопросы:
Принцип, лежащий в основе анализируемого метода;
Необходимое оборудование;
Правила подготовки исследуемого материала и основные источники ошибок возможных при выполнении данного метода;
Единицы измерения;
Понятие о референтных значениях. Клинико-диагностическое значение анализируемого метода.
Практические навыки:
Организация рабочего места для выполнения лабораторных исследований;
Приготовление реагентов в необходимой концентрации;
Прием, маркировка и хранение биологического материала;
Выполнение общего анализа крови;
Выполнение общего анализа мочи;
Выполнение гемостазиологического исследования;
Выполнение биохимических исследований;
Оформение результатов лабораторных исследований;